正文
Mini Trans-Blot Module
电泳转印芯、
PowerPac Basic Power Supply
基础电泳仪(
Bio-Rad
公司);
Epgiadients PCR
仪(
Eppendorf
公司);
ABI7500 fast
荧光定量
PCR
仪(
Life Technologies
公司);
FluorChem FC2
成像分析系统、
AlphaView
系统软件(
Alpha Innotech
公司)。
1.5
细胞培养
细胞复苏、传代与培养参照文献报道方法
[4]
。复苏后的人肺腺癌
A549
、
A549/DDP
细胞,分别接种于
50 mL
培养瓶,加入
RPMI 1640
培养液(含
10%
胎牛血清,青霉素、链霉素各
100 U/mL
)
6 mL
,置于
37
℃、饱和湿度、含
5%CO
2
的孵箱中无菌培养,
A549/DDP
细胞则在
2μg/mL DDP
的
RPMI 1640
培养基中诱导培养,实验前
2 d
,更换成无
DDP
的培养基培养。
1.6
A549
裸鼠皮下移植瘤模型的建立
体外复苏、培养
A549
细胞,在对数生长期收集细胞。
1000 r/min
,离心
5 min
,
PBS
溶液洗涤
2
次,离心弃上清,离心管外周以冰袋维持温度在
4
℃左右,以此来保持细胞活性。用生理盐水稀释,调整细胞浓度到
5
×
10
6
个
/mL
。
80
只裸鼠按照随机数字法随机分为
4
组,每组
20
只,在各组中每只裸鼠右前腋下
sc
接种
0.2 mL
。待所有裸鼠的皮下肿瘤的平均直径达到约
5 mm
时开始给药,每次给药间隔
24 h
。顺铂组
ip
给予
2 mg/kg
顺铂,消岩汤低、高剂量组分别
ig
给予消岩汤水煎液
20
、
40 g/kg
[2]
,对照组小鼠
ig
给予
40 g/kg
生理盐水。连续给药
10 d
后眼眶取血法采血。
1.7
消岩汤含药血清的制备
末次
ig
给药
1 h
后,小鼠称定体质量,眼眶取血法采血,
8 000 r/min
,离心
15 min
,取淡蓝色血清于
2 mL EP
管中,标识组别。
14 000 r/min
,高速离心
5 min
,重复
2
次。分别提取上清,分装,
56
℃水浴灭活
30 min
,用
0.22 μm
微孔滤膜滤过除菌,
−20
℃保存。
1.8
Western
blotting
法检测消岩汤对
A549/DDP
细胞
LRP
和