正文
Trizol
试剂(批号
15596-026
)、
PrimeScript
逆转录试剂盒(批号
RR047A
)、
SYBR Green Real-Time PCR MasterMix
试剂盒(批号
RR420A
)、
Lipofectamine 2000
试剂盒(批号
11668-027
)购自美国
Thermo Fisher Scientific
公司;
RAPI
蛋白裂解液(批号
P0013
)、
BCA
试剂盒(批号
P0010S
)购自美国
Invitrogen
公司;
MTT
试剂盒(批号
GM01-500T
)、
Annexin V-FITC/PI
试剂盒(批号
40302ES20
)购自上海翊圣生物科技有限公司;
Dual-Luciferase Reporter Assay Kit
试剂盒(批号
ab228530
)购自美国
Promega
公司;
Transwell
小室(批号
353090
)购自美国
Corning
公司;紧密连接蛋白(
ZO-1
)抗体(批号
13663
)、上皮钙黏蛋白(
epithelial cadheri
,
E-cadherin
)抗体(批号
3195
)、神经钙黏蛋白(
neuronal cadherin
,
N-cadherin
)抗体(批号
61572S
)、锌指转录因子(
Slug
)抗体(批号
9585
)、第
10
号染色体同源缺失性磷酸酶
-
张力蛋白(
phosphataseand tensin homolog deleted on chromosome ten
,
PTEN
)抗体(批号
9188
)、自噬相关蛋白
5
(
autophagy related protein 5
,
Atg5
)抗体(批号
9980
)、
Atg12
抗体(批号
4180
)、自噬效应蛋白(
Beclin 1
)抗体(批号
3495
)、轻链
3-
Ⅰ
/
Ⅱ
蛋白(
light chain 3-
Ⅰ
/
Ⅱ
,
LC3-
Ⅰ
/
Ⅱ
)兔抗人单克隆抗体(批号
4599
)购自美国
CST
公司;
β-
肌动蛋白(
β-actin
)鼠抗人单克隆抗体(批号
20536-1-AP
)、
HRP
标记的
IgG
抗体购自美国
Protein Tech Group
公司;引物由山东维真生物科技有限公司设计并合成。
1.3
仪器
超净工作台(苏州净化设备一厂);恒温培养箱(美国
Forma Scientific
公司);低温高速离心机(德国
Heraeus
公司);倒置显微镜和光学显微镜(日本
Olympus
公司);酶联免疫检测仪器(华东电子集团医疗装备有限公司);
PCR
扩增仪(美国
ABI
公司);流式细胞仪(美国
Beckman
公司)。
2
方法
2.1
细胞培养
CCL229
细胞和
HIEC
细胞用含
10%
胎牛血清、
1%
青霉素和
1%
链霉素的
DMEM
培养基,于
37
℃
、
5% CO
2
的恒温培养箱中培养。
2.2
青蒿琥酯对
CCL229
细胞存活率的影响
取处于对数生长期的
CCL229
细胞,以
2
×
10
4
/
孔
接种于
96
孔板中,
100 μL/
孔,设置对照组、青蒿琥酯(
5
、
10
、
20
、
40 μg/mL
)组和
5-
氟尿嘧啶(
40 μg/mL
)组,待细胞贴壁后,各给药组加入
100 μL
相应药物,对照组加入不含药物的培养基,分别培养
24
、
48
、
72 h
,加入
20 μL MTT
(
5 mg/mL
)溶液,
37
℃
孵育
4 h
,弃去上清液,每孔加入
150 μL DMSO
,采用酶标仪检测
490 nm
处的吸光度(
A
)值,计算细胞存活率。
2.3
青蒿琥酯对
CCL229
细胞凋亡的影响
取处于对数生长期的
CCL229
细胞,以
1
×
10
5
/mL
接种于
6
孔板中,
2 mL/
孔,设置对照组、青蒿琥酯(
20μg/mL
)组和
5-
氟尿嘧啶(
40 μg/mL
)组,待细胞贴壁后,各给药组加入相应药物,对照组加入不含药物的培养基,培养
24 h
。收集细胞,
1000
×
g
离心
5 min
后弃上清,
PBS
冲洗
3
次后重悬细胞,加入
1 mL 70%
预冷乙醇溶液固定细胞;加入
PBS
离心沉淀去除固定液,加入
100μL RNA
消化酶(
100 μg/mL
),
37
℃
水浴
30 min
,加入
100 μL
碘化丙啶(
PI
,
50 μg/mL
)染色液,
4
℃避光
染色
30 min
后,采用流式细胞仪进行检测。
2.4
青蒿琥酯对
CCL229
细胞侵袭能力的影响
将
Matrigel
和无血清
RPMI 1640
培养基按
1
∶
1
配制成细胞外基质胶,
Transwell
小室中加入
30 μL
细胞外基质胶。按“
2.3
”项下方法处理细胞,收集细胞,以无血清
RPMI 1640
培养基重悬,在
Transwell
小室的上室中加入
200 μL
细胞悬液,下室中加入
600 μL
含
FBS
的
RPMI 1640
培养基,培养
24 h
。擦除小室滤膜内表面细胞,于
4%
多聚甲醛中固定,
PBS
冲洗
3
次后使用
0.1%
结晶紫染色,于显微镜下对穿过膜的细胞进行计数。
2.5
青蒿琥酯对
CCL229
细胞克隆形成的影响
按“
2.3
”项下方法处理细胞,收集细胞,台盼蓝染色后对活细胞进行计数。将细胞接种于
6
孔板,加入
3 mL
含
FBS
的
RPMI 1640
培养基,隔天更换培养基,于恒温培养箱中培养
7 d
后对各组集落数目进行计数。
2.6
青蒿琥酯对
CCL229
细胞自噬特异性蛋白及上皮间质转化
(
epithelial-mesenchymaltransition
,
EMT
)
相关蛋白表达的影响
按“
2.3
”项下方法处理细胞,收集细胞,加入
RIPA
裂解液提取细胞总蛋白,采用
BCA
蛋白定量试剂盒检测蛋白质量浓度,蛋白样品经十二烷基硫酸钠
-
聚丙烯酰胺凝胶电泳,转至
PVDF
膜,加入
5%
脱脂牛奶,于室温封闭
1 h
,分别加入
Beclin1
、
LC3-
Ⅰ
/
Ⅱ
、
Atg5
、
Atg12
、
ZO-1
、
E-cadherin
、
N-cadherin
、
Slug
、
β-actin
抗体(
1
∶
2000
),
4
℃
孵育过夜,
TBST
洗涤
3
次后加入
HRP
标记的
IgG
抗体(
1
∶
10 000
),于室温孵育
1 h
,
TBST
洗涤
3
次后使用
ECL
发光试剂盒显影,采用
Image J
软件分析条带灰度值。
2.7
CCL229
细胞和
HIEC
细胞中
miR-21
mRNA
表达
设置
CCL229
组、
HIEC
组和青蒿琥酯(
20 μg/mL
)组,
HIEC
组加入
HIEC
细胞,其余各组加入
CCL299
细胞,以
1
×
10
5
/mL
接种于
6
孔板中,待细胞贴壁后,青蒿琥酯组加入药物,培养
24 h
。收集细胞,按照试剂盒说明书提取
RNA
并合成
cDNA
,进行
qRT-PCR
分析。引物序列:
miR-21
上游引物
5’-ACACTCCAGCTGGGTAGCTTATCAG-
ACTGA-3’
,下游引物
5’-TGGTGTCGTGGAGTCG-3’
;
U6
上游引物
5’-CTCGCTTCGGCAGCACA-3’
,下游引物
5’-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3’
。
2.8
过表达或抑制
miR-21
对
CCL229
细胞
miR-21
mRNA
表达的影响