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碱基编辑技术是一种革新的基因编辑方法,与传统的CRISPR-Cas9系统不同,它无需引发DNA双链断裂,而是通过精确的化学修饰将一种碱基直接转换为另一种碱基。在该研究中,研究人员利用腺嘌呤碱基编辑器(adenine base editor, ABE),实现了将腺嘌呤(A)转换为鸟嘌呤(G)的单碱基修复,从而有效纠正了ABCA4基因中的致病性c.5882G>A突变。这种技术不仅避免了双链断裂可能引发的细胞毒性,也显著提升了编辑的安全性和效率。
ABE的核心组成包括一个Cas9“切口酶”(nickase)和一个优化的tRNA腺苷脱氨酶(TadA),两者通过指导RNA(gRNA)精准定位到目标突变位点。在短暂的编辑窗口内,ABE将目标腺嘌呤脱氨化,生成鸟嘌呤,与之配对的胸腺嘧啶(T)则被逐步替换为胞嘧啶(C)。该研究通过优化gRNA设计,将突变位点精准定位在编辑窗口中,同时避免潜在的脱靶效应。通过体内和体外实验,研究人员确认,ABE在目标区域的编辑效率高达87%,而脱靶效应低至检测下限,展现了其精准性和安全性。
为了解决基因编辑工具在视网膜中递送的技术瓶颈,研究人员创新性地设计了一种双腺相关病毒(AAV)载体系统。由于ABE的编码序列超过了单个AAV的包装容量,研究团队采用了分体式载体,将ABE拆分为两个部分,通过“蛋白质自组装”恢复功能。这种设计大幅提高了ABE在视网膜细胞中的递送效率,使编辑工具能够有效作用于目标细胞,并实现基因修复。
ABE在体外环境中修复Stargardt病相关基因突变的高效性和可行性
(Credit:
Nature Medicine
)
图像显示了携带ABCA4基因双等位基因突变(c.5882G>A和c.66G>A)的Stargardt病患者与健康个体视网膜的差异。
在患者视网膜中,黄斑中心区域的自发荧光信号显著降低,暗示视网膜色素上皮(RPE)细胞的萎缩。
光学相干断层扫描(OCT)图像进一步展示了患者视网膜中光感受器和RPE层的明显变薄。
研究采用双AAV载体系统递送ABE,以修复c.5882G>A突变,同时针对c.5883A(同义突变)也产生编辑。
图中解释了编辑窗口范围内的目标腺嘌呤位置,并描述了两种tRNA腺苷脱氨酶(WtTadA和eTadA)的作用机制。
图中列举了用于评估编辑效率的模型系统,包括视网膜光感受器和RPE细胞模型。
表格详细说明了模型的基因型、目标腺嘌呤位置、递送方式以及特定的gRNA类型(如STGD-gRNA、wt-gRNA和ms-gRNA)。
d:在携带ABCA4突变的HEK293T细胞中,使用不同分割位点的ABE7.10,评估其对目标位点(A7和A8)的编辑效率。结果显示,编辑效率因分割位点的不同而异,未分割的ABE7.10表现最佳。
e:比较了多种ABE版本(包括ABE8.5)的编辑效率,并通过双AAV递送,在人类iPS细胞衍生的RPE细胞中观察到高效编辑。